Hygiene / Reinigung

Fehlende Reinigung und Hygiene kann zu unterschiedlichen Schädlingsproblemen mit Folgeschäden an Exponaten führen.

Ausstellungs- und Publikumsbereiche

Neben der täglichen Unterhaltsreinigung von Ausstellungsräumen sollten in regelmäßigen Abständen auch nachfolgende Bereiche kontrolliert und bei Bedarf gereinigt werden:

• Hohlräume hinter und unter Vitrinen, Schränken und Sockeln.
• Filzbespannungen in Vitrinen und Dichtungsleisten aus Echthaar-Filz
• Kabel- oder Lüftungskanäle in Wand und Bodenbereich
• Heizungsnischen im Wandbereich
• Spalten zwischen Böden und Wänden (siehe nachfolgendes Bild)
• Bodenkanäle für Lüftung oder Elektroanschlüsse

Neben den Ausstellungsräumen ist speziell auf direkte Nebenräume, wie Abstellkammern, Technikräume, Elektro- oder Lüftungszentralen usw. zu achten. In manchen Fällen können auch abgehängte Decken mit offenen Fugen zum darunter befindlichen Innenraum verschmutzt sein und können über Wartungsklappen kontrolliert werden.

Depots, Magazine und Lagerräume

Speziell in Depots, Magazinen oder Lagerräumen mit hoher Auslastung durch Exponate und schwerer Zugänglichkeit zum Reinigen ist es für Schädlinge oft günstig sich zu vermehren und auszubreiten. Nachfolgende Bereiche oder Gegenstände sollten bei der Reinigung und Kontrolle beachtet werden:

• Dachböden und Keller, die nicht genutzt werden
• Ausstellungsmaterial, welches nicht mehr verwendet wird und Nahrungspotential für Insekten hat (z.B. Filzbespannung in Vitrinen)
• Verpackungsmaterial, das Nahrungspotential für Insekten hat (z.B. Papier, Kartons, Transportkisten aus Tischlerplattenholz mit Gabufurnier)
• Regalböden in Magazinen.
• Oberseiten von Kanälen von Klimaanlagen (soweit zugänglich)

Für die Reinigung wird ein museumstauglicher Sauger mit HEPA-Filter empfohlen, wenn es sich um Feinstaub, Schimmelpilze, Bakterien o.ä. handelt. Staubaufwirbelnde Arbeiten sind zu vermeiden. Die regelmäßige Wartung von Klimaanlagen dient zum Austausch verschmutzter Filter im System.

Literatur

Lloyd H. et al (2007) Dust in Historic Libraries. Museum Microclimates, The National Museum of Denmark, Copenhagen. 135-144

Wimmer M. (2023) Der Dreck muss weg. Oder? Theorie und Praxis von Schmutz und Reinigen im Freilichtmuseum Glentleiten. In: Jahrbuch für die oberbayer. Freilichtmuseen Glentleiten und Amerang. S.127-139

The British Museum Blog: What Lurks Under The Microscope? Dust Detective Work (Zugriff am 15.08.2021)

Insektenfallen Tabelle

Häufig vorkommenden Museumsschädlinge und die am Markt verfügbaren und geeigneten Überwachungssysteme (Fallen);

L= Larve, K= Käfer, Nummer (siehe Legende)

Schädlingsart	Klebefalle	Pheromon	Fraßlockstoff	Lichtfalle	Gelbtafel
Käfer
Museumskäfer (Anthrenus museorum)	+ L, K		+ L	+ K
Polsterwarenkäfer (Anthrenus flavipes)	+ L, K	(+)	+ L	+ K
Wollkrautblütenkäfer (Anthrenus verbasci)	+ L, K	+ (4)	+ L (1+2)	+ K
Australischer Teppichkäfer (Anthrenocerus australis)	+ L, K		+ L	+ K
Brauner Pelzkäfer (Attagenus smirnovi)	+ L, K	+	+ L	+ K
Dunkler Pelzkäfer (Attagenus unicolor)	+ L, K	+ 4+5	+ L (1+2)	+ K
Pelzkäfer (Attagenus spp.)	+ L, K		+ L (1+2)	+ K
Gemeiner Speckkäfer (Dermestes lardarius)	+ L, K		+ L (1+2)	+ K
Speckkäfer (Dermestes spp.)	+ L, K		+ L (1+2)	+ K
Berlinkäfer (Trogoderma angustum)	+L, K			+ K
Khapra-Käfer (Trogoderma granarium)	+ L, K	+ K	+ (3)	+ K
Odd Beetle Thylodrias contractus	+ L, K
Kugelkäfer (Gibbium psylloides)	+ K
Messingkäfer (Niptus hololeucus)	+ K
Diebskäfer sp.	+ K
Moderkäfer (z.B. Latridiidae)	+ K
Brotkäfer (Stegobium paniceum)	+ K	+ K	+	+ K	+ K
Tabakkäfer (Lasioderma serricorne)	+ K	+ K	+ L (3)	+ K	+ K
Holzschädlinge
Splintholzkäfer (Lyctus spp.)	+ K			+ K
Gemeiner Nagekäfer (Anobium punctatum)	+ K			+ K
Motten
Kleidermotte (Tineola bisselliella)	+	+
Pelzmotte (Tinea pellionella)	+	+
Fellmotte (Monopis spp.)	+			+
Dörrobstmotte (Plodia Interpunctella)	+	+
Kleistermotte (Endrosis sarcitrella)	+			+
andere Insekten
Fliegen (Diptera spp.)	+			+	+
Schaben (Blattella/Blatta spp.)	+		+
Papierfischchen (Ctenolepisma longicaudata)	+		+
Silberfischchen (Lepisma saccarina)	+		+
Staubläuse (Psocoptera)	+
Ameisen (z.B. Lasius spp.)	+		+	geflügelte Tiere
Spinnen, Asseln, Laufkäfer, Tausendfüßer, Hundertfüßer,	+		+

 Legende:

  1 = Dermestid larval monitor (Ködertablette für Larven)

  2 = Dermestid beetle Kit (Ködertablette für Käfer und Larven)

  3 = Gel Attractant (Gel-Köder)

  4 = AA Carpet beetle Lure (Doppelpheromon-Dispenser mit 6 Pheromonen

         und Kairomone für Attagenus und Anthrenus-Käfer)

  5 = Black Carpet Beetle Lure (Pheromon für Dunkler Pelzkäfer)

Literatur

Biebl (2018) Museumsschädlingen auf der Spur. Monitoring von Insekten und Schadnagern in Kultureinrichtungen, Restauro 2, S. 30–37.

Monitoring – Pheromone Tips | Museumpests.net

The Pherobase Database of pheromones and semiochemicals. Datenbank und Literatur Zugriff 27.01.2021

Untersuchung mit Hilfsmitteln

Folgende Hilfsmittel können zur Unterstützung beim Monitoring oder Überprüfen genutzt werden:

• Persönliche Schutzausrüstung (kontaminierte Bereiche)
• Taschenlampe / Stirnlampe (notfalls Smartphone mit Lampe)
• Probetöpfchen (zum Aufsammeln von Insekten)
• Digitalkamera bzw. Smartphone, ggf. mit Aufsatzlupe
• Notizblock bzw. Smartphone
• Lageplan des Gebäudes oder Räume
• Thermohygrometer (Klima)
• Lupe / Smartphone mit Aufsatzlupe / USB-Digital-Mikroskop
• Bestimmungshilfen (Buch, Insektenbilder oder digitale Bestimmungsschlüssel wie „Offene Naturführer.de“

Weitere Methoden zur Detektion von Insekten, wie z.B. Röntgenstrahlung, Thermografie, akustische Schallemissions-Messung usw. sind in der nachfolgenden Literaturliste zu finden.

Biologische Hilfsmittel

Literatur

Al-Doski J. et. al. (2016) Thermal Imaging for Pests Detecting – A review. International Journal of Agriculture, Forestry and Plantation, Vol. 2, 10-30

Arbat S. et al. (2021) The Case History of an Insect Infestation Revealed Using X-ray Computed Tomography and Implications for Museum Collections Management Decisions. Heritage 4, 1016–1025 The Case History of an Insect Infestation Revealed Using X-ray Computed Tomography and Implications for Museum Collections Management Decisions (researchgate.net)

Becker, M, Berger, B, König, S, Taddei, A, Hoppe, B, Plinke, B (2020): Innovative Diagnosemethoden zum Nachweis holzzerstörender Insekten. In: Journal für Kulturpflanzen 72(8), 453-465

Biebl S. und Wapler G. (2023) Dem Holzwurm auf der Spur. Akustische Aktivitäts-Detektion von holzzerstörenden Insekten. Der praktische Schädlingsbekämpfer, Ausgabe 1, S. 16-17

Creemers, J G M (2015): Use of Acoustic Emission (AE) to Detect Activity of Common European Dry-Woodboring Insects: Practical Considerations. Int. Symp. Non-Destructive Testing in Civil Engineering (NDT-CE), Berlin, Germany, 573-580.

Hasenstab A. (2021) Zerstörungsfreie Prüfmethoden in der Altbausanierung und Denkmalpflege. Erfolgreiche praktische Anwendung. Bausubstanz 2/2021. S. 30-40

Kerner G., Thiele H., Unger W (1980) Gesicherte u. zerstörungsfreie Ortung der Larven holzzerstörender Insekten im Holz, In: Holztechnologie 21 (3). S 131-137

Krajewski A et al (2020) The progress in the research of AE detection method of old house borer larvae (Hylotrupes bajulus L.) in wooden structures. Construction and Building Materials 256

Lewis V. et al (1997) Evaluation of dog-assisted searches and electronic odor devices for detecting the western subterranean termite. Forest Product Journal. Vol. 47, No.10. 79-84

Morinière J. et. al (2019) A DNA barcode library for 5,200 German flies and midges (Insecta: Diptera) and its implications for metabarcoding-based biomonitoring. Mol Ecol Resour. 19. 900–928.

Müller-Blenkle, C., S. Kirchner, I. Szallies und Adler C. (2018) A new approach to acoustic insect detection in grain storage. Submitted to the Proceedings of the 12th International Working Conference on Stored Product Protection Berlin, Germany, October 7-11. Akustische Früherkennung von vorratsschädlichen Insekten in Getreide

Noldt, U (2014): Insekten. In: Binker, G, Brückner, G, Flohr, E, Huckfeldt, T, Noldt, U, Parisek, L, Rehbein, M, Wegner, R: Praxis-Handbuch Holzschutz – Beurteilen, Vorbereiten, Ausführen. Verlag Rudolf Müller, Köln, p. 112-153.

Pamplona M. and Grosse C. (2019) Zerstörungsfreie Prüftechniken für die Anwendung an technischen Kulturgütern in Museen. DGFzP Jahrestagung. S. 1-7

Querner P. und Sauseng G. (2019) Spürhundearbeit im Integrated Pest Management. Restauro 2. S. 44-49

Sachs J, Helbig M, Renhak K (2008): Unsichtbares wird sichtbar – Mit Radar den Insekten auf der Spur. Dokumentation zum Kongress des Deutschen Holz- und Bautenschutzverbandes in Kooperation mit der WTA 30. und 31. Oktober 2008, Landschaftspark Duisburg-Nord. Hrsg.: Deutscher Holz- und
Bautenschutzverband e.V., Köln, 45-48

Schmidt R., Göller S., Hertel H. (1995) Computerized detection of feeding sounds from wood boring beetle larvae. Material und Organismen. 295-304

Tscherne F. (2016) Schadensbegutachtung an Holzkonstruktionen. In: EIPOS-Tagungsband Holzschutz 2016, Fraunhofer IRB Verlag, S. 65-75

Vaiedelich, S. and S. Le Conte (2013) In situ acoustical detection of Xylophage. Programme International Conference on IPM in museums, archives and historic houses, Vienna 2013: 70

Inspektion: wie und wo sucht man nach Schädlingen

Bei der Inspektion (Monitoring) ist neben den Sammlungsgütern auch auf Spuren von Schadinsekten oder Nagern zu achten, die man in Räumen finden kann. Da manche Insekten nachtaktiv sind oder sich als passives Stadium (Larve, Puppe) gut versteckt halten, ist gezielt zu suchen. Das Mitführen einer Lampe (Lichtquelle) beim Absuchen von dunklen Stellen (z.B. Ritzen, Fugen, Hohlräume) ist grundsätzlich wichtig!

(weiterlesen…)