Schädlinge.

Ausstellungsdekoration

Einschleppungsquelle von Insekten oder Schimmelpilzen

Fraßgelköder

Biozide Gele / Pasten zur Bekämpfung von Insekten

Hygiene / Reinigung

Fehlende Reinigung und Hygiene kann zu unterschiedlichen Schädlingsproblemen mit Folgeschäden an Exponaten führen.

Ausstellungs- und Publikumsbereiche

Neben der täglichen Unterhaltsreinigung von Ausstellungsräumen sollten in regelmäßigen Abständen auch nachfolgende Bereiche kontrolliert und bei Bedarf gereinigt werden:

• Hohlräume hinter und unter Vitrinen, Schränken und Sockeln.
• Filzbespannungen in Vitrinen und Dichtungsleisten aus Echthaar-Filz
• Kabel- oder Lüftungskanäle in Wand und Bodenbereich
• Heizungsnischen im Wandbereich
• Spalten zwischen Böden und Wänden (siehe nachfolgendes Bild)
• Bodenkanäle für Lüftung oder Elektroanschlüsse

Neben den Ausstellungsräumen ist speziell auf direkte Nebenräume, wie Abstellkammern, Technikräume, Elektro- oder Lüftungszentralen usw. zu achten. In manchen Fällen können auch abgehängte Decken mit offenen Fugen zum darunter befindlichen Innenraum verschmutzt sein und können über Wartungsklappen kontrolliert werden.

Rückstände in Bodenfugen mit Haaren und Wollabrieb

Spinnweben in einem Ausstellungsraum eines großen europäischen Museums

Kehrbesen in einem Außendepot eines Museums

Depots, Magazine und Lagerräume

Speziell in Depots, Magazinen oder Lagerräumen mit hoher Auslastung durch Exponate und schwerer Zugänglichkeit zum Reinigen ist es für Schädlinge oft günstig sich zu vermehren und auszubreiten. Nachfolgende Bereiche oder Gegenstände sollten bei der Reinigung und Kontrolle beachtet werden:

• Dachböden und Keller, die nicht genutzt werden
• Ausstellungsmaterial, welches nicht mehr verwendet wird und Nahrungspotential für Insekten hat (z.B. Filzbespannung in Vitrinen)
• Verpackungsmaterial, das Nahrungspotential für Insekten hat (z.B. Papier, Kartons, Transportkisten aus Tischlerplattenholz mit Gabufurnier)
• Regalböden in Magazinen.
• Oberseiten von Kanälen von Klimaanlagen (soweit zugänglich)

Für die Reinigung wird ein museumstauglicher Sauger mit HEPA-Filter empfohlen, wenn es sich um Feinstaub, Schimmelpilze, Bakterien o.ä. handelt. Staubaufwirbelnde Arbeiten sind zu vermeiden. Die regelmäßige Wartung von Klimaanlagen dient zum Austausch verschmutzter Filter im System.

Literatur

Lloyd H. et al (2007) Dust in Historic Libraries. Museum Microclimates, The National Museum of Denmark, Copenhagen. 135-144

Wimmer M. (2023) Der Dreck muss weg. Oder? Theorie und Praxis von Schmutz und Reinigen im Freilichtmuseum Glentleiten. In: Jahrbuch für die oberbayer. Freilichtmuseen Glentleiten und Amerang. S.127-139

The British Museum Blog: What Lurks Under The Microscope? Dust Detective Work (Zugriff am 15.08.2021)

Informationen im Internet (Englisch)

www.museumpest.net Die amerikanische Vorlage für die deutsche Informationsseite Museumsschädlinge.de mit vielen Informationen über IPM, Bekämpfungsmethoden, Insektenbiologie, Literatur usw.

www.whatseatingyourcollection.com Die britische Homepage von Jane Thompson Webb und David Pinniger in Zusammenarbeit mit verschiedenen Institutionen. Informationen zu Diagnose und Lösungen, Fundnachweise von Insekten, IPM-Datensammlung und Literatur.

Pest Eradication Materials Database (PEMD) Risikobewertungstool von Ashley Bowersox für die Bewertung von befallenen Objekten. Als Masterarbeit in Zusammenarbeit mit dem FAIC

Introduction to Museum Pests Ein E-Learning-Tool vom Museum of London mit Schädlingen, Lösungen und Testfragen zum Thema IPM

FUNdamentals of Museum IPM. Eine Zusammenfassung von Christa Deacy-Quinn (collections manager) aus dem Jahr 2019 als Free-Book

Insectes du Patrimonie Culturel (CICRP) Eine Datenbank mit über 115 Arten von Insekten unseres Kulturerbes aus Frankreich

Insectes muséophages (OCIM) Eine französische Informationsseite zur Insektenbestimmung für Fachleute von Museen, Bibliotheken und Archiven ohne entomologische Kenntnisse

Pest Odyssey Die englische Informationsseite der Pest Odyssey UK group

www.english-heritage.org.uk Guidance notes and Fact sheet. Informationen über Museumsschädlinge, Kälteanwendung, ein Schädlingsposter und Monitoring Tools.

www.english-heritage.org.uk Forschung zu Kleidermotten in England (UK)

www.cultureelerfgoed.nl Buggy Biz: Integrated Pest Management in Collections. Netherlands Institute for Cultural Heritage (ICN) and IADA, Amsterdam

Pest Partners South West Museum Development mit Unterstützung von Historic England. Informationshomepage und Anleitungen zum Schädlingsmanagement mit hilfreiche Videos zur Installation von Monitoring-Fallen oder das Einfrieren von Objekten. Entwicklung eines Kartenspiels mit Museumsschädlingen, siehe Presse/Öffentlichkeit 2021.

ICUP Proceedings Verschiedene Beiträge zu den Internationalen Tagungen für Städtische Schädlinge (International Conference on Urban Pests), die seit 1993 bis 2017 alle 3 Jahre an verschiedenen Orten der Welt stattfinden (u.a. in England, USA, Singapur, Brasilien, Schweiz)

IWCSPP International Working Conference on Stored Product Protection Einzelne Beiträge zu Themen aus dem Museumsbereich oder Museumsschädlinge.

IBBS International Biodeterioration and Biodegradation Symposium Einzelne Beiträge zu Themen aus dem Museumsbereich oder Museumsschädlinge.

IOBC WPRS International organisation for Biological Control West Palaearctic Regional Section. Einzelne Beiträge zu Schädlingen und Methoden im Vorratsschutz und Museumswesen

ICOM-CC’s Triennial Conference / ICOM General Conferences Museum International Publikationen

Journal of Pest Science (Springer Link Online) Das Journal of Pest Science wird seit 1925 veröffentlicht und ist eine führende Fachzeitschrift, die sich allen Facetten der Schädlingsforschung widmet, einschließlich der Forschung in den Bereichen Landwirtschaft, Gartenbau, Forstwirtschaft, städtische Schädlinge und Vorratsschutz.

International Journal of Pest Management (Taylor & Francis Online) Forschungsarbeiten und Übersichtsarbeiten, die sich mit der Schädlingsbekämpfung im weiteren Sinne befassen. Wirbellose, Wirbeltiere, Unkräuter, – einschließlich biologischer Bekämpfung

Insects Limited Beratung, Forschung & Entwicklung und Verkauf von Pheromonen & Fallensystemen aus USA. Veranstalter der international bekannten Konferenzen Fumigants & Pheromones und langjähriger Herausgeber informativer Newsletter.

Insektenfallen Tabelle

Häufig vorkommenden Museumsschädlinge und die am Markt verfügbaren und geeigneten Überwachungssysteme (Fallen);

L= Larve, K= Käfer, Nummer (siehe Legende)

 Legende:

  1 = Dermestid larval monitor (Ködertablette für Larven)

  2 = Dermestid beetle Kit (Ködertablette für Käfer und Larven)

  3 = Gel Attractant (Gel-Köder)

  4 = AA Carpet beetle Lure (Doppelpheromon-Dispenser mit 6 Pheromonen

         und Kairomone für Attagenus und Anthrenus-Käfer)

  5 = Black Carpet Beetle Lure (Pheromon für Dunkler Pelzkäfer)

Literatur

Biebl (2018) Museumsschädlingen auf der Spur. Monitoring von Insekten und Schadnagern in Kultureinrichtungen, Restauro 2, S. 30–37.

Monitoring – Pheromone Tips | Museumpests.net

The Pherobase Database of pheromones and semiochemicals. Datenbank und Literatur Zugriff 27.01.2021

Inspektion: wie und wo sucht man nach Schädlingen

Bei der Inspektion (Monitoring) ist neben den Sammlungsgütern auch auf Spuren von Schadinsekten oder Nagern zu achten, die man in Räumen finden kann. Da manche Insekten nachtaktiv sind oder sich als passives Stadium (Larve, Puppe) gut versteckt halten, ist gezielt zu suchen. Das Mitführen einer Lampe (Lichtquelle) beim Absuchen von dunklen Stellen (z.B. Ritzen, Fugen, Hohlräume) ist grundsätzlich wichtig!

Kälteverfahren

Technisches Abkühlen von Räumen

Klebefalle mit Köder

Insektenklebefalle mit einer Ködertablette oder Ködermaterial

Klebefallen ohne Köder

Insektenklebefalle ohne Ködermaterial

Lösungen

Verfahren und Methoden zur Bekämpfung und begleitende Informationen

Nach der Behandlung

Überprüfung des Erfolgs und sichere Lagerung

Pheromone

Populations-Reduzierung oder Verwirrtechnik (mating disruption)

Populations-Reduzierung

Durch das Abfangen von männlichen Mottenfaltern mit Pheromon- bestückten Fallen (z.B. mit Klebefläche oder Trichterfalle) ist eine gewisse Populations-Reduzierung bei starkem Befall möglich. Eine Bekämpfung ergibt sich aber daraus nicht, da keine weiblichen Motten gefangen werden können, die nach der Paarung pro Tier bis zu 200 Eier an Textilien ablegen können.

Männliche Kleidermottenfalter auf einer Pheromonfalle

Verwirrtechnik (mating disruption)

Mit hochdosierten artspezifischen Pheromonen, die in Tabletten aus einem lebensmittelechten Pulver (Entostat) gebunden sind, können männliche Mottenfalter angelockt und bei Kontakt elektrostatisch bestäubt werden. Die mit weiblichen Pheromonen bestäubten Männchen werden bei der weiteren Paarungssuche gestört bzw. verwirrt, da ihre Pheromonrezeptoren überlastet sind. Diese Methode wurde 2011 von der Firma Exosect als patentierte Verwirrtechnik (Auto-Confusion-System) mit dem Produkt “ExoSex SPTab” in Deutschland auf den Markt gebracht. Neben blauen Pheromon-Dispensern für Lebensmittelmotten (Plodia/Ephestia) wurden auch transparente Dispenser mit Pheromonen für die Kleidermotte (Tineola bisselliella) entwickelt. Praktische Versuche in Museen mit Kleidermottenbefall wurden in England (English Heritage), Deutschland und Österreich (Eigentests von den Verfassern) durchgeführt. Daten über längerfristige Erfolge fehlen aber bislang noch (Pinniger et al. 2016).

Dispenser mit Pheromon-Tablette zum Anlocken von männlichen Kleidermotten-Faltern in einem Museum

Literatur

Biebl S. (2013) Nützlinge gegen Kleidermotten. Praktische Erfahrungen im Deutschen Museum München. Restauro 1. S. 39-41

Biebl S. (2009) Deutsches Museum: Nützlinge gegen Kleidermotten, Der praktische Schädlingsbekämpfer Ausgabe 03, Seite 14-15

Higgs S. / Bridal J. (2011) Moths, Exosex and floor voids at Hampton Court Palace. In: Windsor, P. et al. (Hg.), Integrated Pest Management for Collections, Proceedings of 2011: A Pest Odyssey, 10 Years Later. English Heritage, Swindon: 61-65

Karg G. (2006) Mottenkontrolle durch Paarungsstörung. Der praktische Schädlingsbekämpfer (DpS) 11. S.10-11

Lachmuth U. (2011) Verwirrtechnik (mating disruption) im Museum. Ein neuer Ansatz zum Schutz von Textilien und naturwissenschaftlichen Exponaten vor Mottenbefall. In: Beiträge zur Erhaltung von Kunst- und Kulturgut. VDR Heft 2, S. 116-117

Lauder D. (2011) The Exosex clothes moth system and English Heritage. In: Windsor, P. et al. (Hg.), Integrated Pest Management for Collections, Proceedings of 2011: A Pest Odyssey, 10 Years Later. English Heritage, Swindon: 204

Pinninger et al. (2016)  Handbuch Integriertes Schädlingsmanagement in Museen, Archiven und historischen Gebäuden, Gebr. Mann Verlag Berlin. Seite 96

Pinniger D. (2011) New developments in pest management for collections in museums and historic houses. In: Proceedings of the Seventh International Conference on Urban Pest . S. 17-21

Pilzbestimmung

Hier finden Sie Hinweise auf spezialisierte Fachleute

Schädlingsbestimmung

Erkennen von schädlichen Insekten oder Nagetieren

Schimmelkäfer

Anzeiger für Feuchteproblem in Gebäuden und Schimmelpilzfresser

Toxische Begasung

Anwendung von Begasungsmitteln zur Bekämpfung von Insekten in und an Gebäuden

Bei einer Begasung wird ein Raum oder Gebäude mit einem toxischen Gas geflutet, das durch Objekte wie Holz, Tierpräparate oder Textilien komplett hindurch diffundiert und auch durch anschließendes “Lüften” wieder entweicht. Durch gasdichte Folien können transportable Gegenstände oder stationäre Objekte (z.B. Kirchenausstattung oder Lagerregale) auch in einer flexiblen Einhausungen begast werden.

Frühere Begasungsmittel waren Methylbromid (Brommethan / MeBr), Phosphin (Phosphorwasserstoff / PH3), Ethylenoxid, Cyanwasserstoff (Hydrogencyanid oder Blausäure / HCN), Schwefelkohlenstoff, Tetrachlorkohlenstoff und Ethylendichlorid. Diese hochtoxischen Gase sind in den meisten Ländern der Erde mittlerweile nicht mehr erlaubt oder finden aufgrund schädlicher Veränderungen an Kunstobjekten schon länger keine Anwendung mehr.

Die toxischen Begasungsmittel Bluefume (HCN) oder Phosphin (PH3) werden aktuell noch in der Schädlingsbekämpfung gegen Insekten oder Schadnager verwendet. Während Bluefume (HCN) als Biozid die Zulassungen für Produktart 8 (Holzschutz), 14 (Rodentizide) und 18 (Insektizide) hat und u.a. bei Rundhölzern oder Balken in Containern zugelassen ist, haben Phosphin-Präparate (Aluminium- oder Calciumphosphid) meist eine Zulassung für die Bekämpfung von z.B. Wühlmäusen usw.

Heute gilt das Begasungsmittel Vikane mit dem Wirkstoff Sulfuryldifluorid als zugelassenes gasförmiges Biozid im Bereich Produktart 8 (Holzschutz), das speziell in Freilichtmuseen oder Kirchen zum Einsatz gegen holzzerstörende Insekten kommt. Die erste Begasung einer Kirche mit Vikane in der Europa, wurde durch Binker 1993 beschrieben. Die Bekämpfung erfolgt i.d.R. gegen den Gemeinen Nagekäfer oder in selteneren Fällen gegen den Hausbockkäfer. In der Produktart 18 (Insektizide) ist der Wirkstoff Sulfuryldifluorid mit dem Namen Profume im Bereich Vorratsschutz zugelassen. Hier können Bekämpfungen gegen Schadinsekten in Gebäuden durchgeführt werden, wie es beispielsweise beim Messingkäfer oder Kugelkäfer (Ptinidae) in historischen Gebäuden der Fall ist. Die Anwendung ist nur konzessionierter Fachfirmen mit firmenbezogener Erlaubnis erlaubt und erfordert langjährige praktische Erfahrungen.

Da die sogenannten “reaktiven Gase” unter Umständen eine chemische Reaktion mit anderen Materialien eingehen können, ist die Anwendung im kulturhistorischen Bereich eingeschränkt, wenn das Risiko einer möglichen Veränderung von Farben oder Oberflächen bei Objekten besteht. Siehe dazu auch Schäden durch chemische oder physikalische Behandlungen.

Schäden bzw. Objekt-Veränderungen durch reaktive Gase an Objekten oder Gebäuden wurden in der Vergangenheit über die Forschung oder Praxisfälle bekannt (Koestler 1993 oder Emmerling 1995). Bei den bekannteren Schadensfällen handelte es sich überwiegend um Fehlanwendungen (z.B. Phosphin bei Objekten mit Goldfassung) oder ungünstige Bedingungen, wie sehr hohe Luftfeuchten während der Begasung. Vor einer Anwendung empfiehlt sich grundsätzlich eine Risikoabschätzung durch Fachleute wie Restauratoren:innen oder Sachverständige, ob das gewählte Begasungsmittel zu möglichen Schäden oder Veränderungen an Fassungen, Farben oder Pigmenten führen könnte.

Aktuell wird von unterschiedlichen Experten aus ganz Deutschland an dem neuen WTA-Merkblatt 1-18 für Begasung gearbeitet, um ein aktuelles Regelwerk für die Praxis bereitstellen zu können. Die Gründungssitzung der neuen WTA-Arbeitsgruppe mit dem Thema Begasung und modifizierte Atmosphären zur Bekämpfung tierischer Holzzerstörer in Bauwerken aus dem Referat 1 Holz und Holzschutz fand am 20.07.21 in Bronzell bei Fulda statt.

Hinweise:

Häufig wird in der Praxis die Begasung mit anderen Verfahren, wie die Vernebelung oder Sprühen mit einem Kontaktinsektizid, verwechselt. Diese Verfahren dringen aber nicht vollständig durch Objekte, sondern benetzen nur die Oberfläche und töten keine Insekten innerhalb des Behandlungsmaterials.

Eine Behandlung von Objekten oder Räumen mit dem Oxidationsmittel Ozon (O3) ist nicht zulässig oder empfehlenswert. Siehe auch: Technik FAQ.

Aktuelles zur Gesetzgebung:

Neue mögliche Einschränkungen beim Schutz von Kulturgut in Deutschland. Am 10.06.22 gab es im deutschen Bundesrat eine Beschluss-Sitzung zu einer geplanten Novellierung der Verordnung des Europäischen Parlaments und Rates über fluorierte Treibhausgase (EU-Richtlinie 2019/1937). Die sogenannten F-Gase kommen in der Kälte- und Klimatechnik zum Einsatz. Das EU-zugelassene Biozidprodukt Sulfuryldifluorid (chemisch SO2F2) steht auf der Liste mit schädlichen F-Gasen, bei der auf europäischer Ebene nicht berücksichtigt wurde, dass es sich um ein nicht substituierbares Mittel zum Erhalt von historischen Gebäuden (u.a. Museumsgebäude, Kirchen, Baudenkmäler) oder beim Export von Handelsgütern handelt. Der deutsche Schädlingsbekämpfer- Berufsverband DSV hat bereits eine Stellungnahme verfasst und versucht Einfluss auf die Politik bzw. Bundesregierung zu nehmen, damit ein Anwendungsverbot des noch zugelassenen Begasungsmittels umgesetzt wird. Letzter Stand 22.03.2023

Literatur

Anonymus: Getty Conservation Institut: Insect Control with the Fumigant Vikane (1986-1990)

Bauer W.P (1989) Methoden u. Probleme der Bekämpfung von Holzschädlingen mittels toxischer Gase, In: Restauratorenblätter Bd. 10 Wien, S. 58-62

Biebl W. (1995) Erfahrungsbericht über die Langzeitwirkung von Begasungen in Bayern. In: Holzschädlingsbekämpfung durch Begasung, Tagungsbericht Nr. 3, Arbeitshefte des Bayerischen Landesamtes für Denkmalpflege, Bd. 75,  S. 70-71

Binker G. (1993) Report on the first fumigation of a church in Europe using sulfury fluoride. K. B. Wildey, W.H. Robinson (Hrsg.): Proceedings of the 1st Int. Conf. on Insects Pests in the Urban Enviroment. St. John´s College, Cambridge, 30 June – 3 July 1993, 51-55

Burgess, Helen D., and Nancy E. Binnie (1990) The Effect of Vikane™ on the Stability of Cellulosic and Ligneous Materials — Measurement of Deterioration by Chemical and Physical Methods. MRS Online Proceedings Library 185, Nr. 1. 791–98. Zugriff am 27.07.2021

Dreger I. (2012) Risiko- und Nutzenanalyse zum Einsatz von SF-Gas bei der Bekämpfung von Hausfäulepilzen in Denkmälern In: Beiträge vom 16. EIPOS-Sachverständigentag Holzschutz am 5.Dezember 2012, S.3-22, Fraunhofer IRB Verlag

Emmerling E (1995) Holzschädlingsbekämpfung durch Begasung, In: Holzschädlingsbekämpfung durch Begasung, Tagungsbericht Nr. 3, Arbeitshefte des Bayerischen Landesamtes für Denkmalpflege, Bd. 75,  S. 43-57

Grosser D. Rossmann E (1974) Blausäuregas als bekämpf. HS-Mittel für Kunstobjekte, In: Holz a. Roh und Werkstoff  32, S. 108-114

Hertwig N. (2020) Holzschutz im Quadrat. Die Schädlingsbehandlung des Bernöderhofes. In: Jahrbuch für die oberbayerischen Freilichtmuseen Glentleiten und Amerang Jg. 15/2020. S. 106-117

Kenaga E.E. (1957) Some Biological, Chemical and Physical Properties of Sulfuryl Fluoride as an Insecticidal Fumigant, In: Journ. of Econ. Entom. Bd. 50 (1957) No. 1, S. 1-6

Koestler R.J., Parreira E (1993) Visual effects of selected biocides on easel painting materials In: Studies in Conservation 38, S. 265-273

Liese W., Knigge H., Rütze M. (1981) Fumigation Experiments with Methyl Bromide on Oak Wood, In: Material u. Organismen 16, S. 265-280

Mori H. and Kumagat M. (1954) Damage to antiquities caused by fumigants. I Metals. Scientific Papers of Japanese Antiques and Art Crafts 8. 17

Reichmuth, C. (1991) New techniques in fumigation research today. In: Fleurat-Lessard, F., P. Ducom, (Eds.): Proceedings of the 5^th International Working Conference on stored-Product Protection. 9-14 September 1990 in Boredeaux, France, Imprimerie Médocaine, Blanquefort Cedex, 2066 pp, Vol 2, 709-725.

Reichmuth, C. (2007) Fumigants for pest control in wood protection. In: Noldt, U., H. Michels, (Eds.): Holzschädlinge im Fokus – Alternative Maßnahmen zur Erhaltung historischer Gebäude. Beiträge der internationalen Tagung im LWL-Freilichtmuseum Detmold. 28.-30. 6. 2006 im Westfälischen Landesmuseum für Volkskunde in Detmold, Schriften des LWL-Freilichtmuseums Detmold, Westfälisches Landsmuseum für Volkskunde, herausgegeben im Auftrage des Landschaftsverbandes Westfalen-Lippe von Carstensen, J., Bd. 27, Merkur Verlag, Detmold, 265 S., 137-162.

Unger A. (1993) Begasung von Kulturgütern: Grundlagen-Materialien-Entwicklungen. In: Holzschädlingsbekämpfung durch Begasung, Tagungsbericht Nr. 3, Arbeitshefte des Bayerischen Landesamtes für Denkmalpflege, Bd. 75,  S. 19-27

Williams L.H., Sprenkel R.J. (1990) Ovicidal Activity of Sulfuryl Fluoride to Anobiid and Lyctid Beetle Eggs of Various Ages, In: Journ. of entomol. Science 25, S. 366-375

Untersuchung mit Hilfsmitteln

Folgende Hilfsmittel können zur Unterstützung beim Monitoring oder Überprüfen genutzt werden:

• Persönliche Schutzausrüstung (kontaminierte Bereiche)
• Taschenlampe / Stirnlampe (notfalls Smartphone mit Lampe)
• Probetöpfchen (zum Aufsammeln von Insekten)
• Digitalkamera bzw. Smartphone, ggf. mit Aufsatzlupe
• Notizblock bzw. Smartphone
• Lageplan des Gebäudes oder Räume
• Thermohygrometer (Klima)
• Lupe / Smartphone mit Aufsatzlupe / USB-Digital-Mikroskop
• Bestimmungshilfen (Buch, Insektenbilder oder digitale Bestimmungsschlüssel wie “Offene Naturführer.de”

Aufsatzlupe für Smartphone mit Lampe

Suchbegriffe Internet: 60x Zoom Mikroskop Lupe, Handy mikroskop, LED + Uv Licht Clip on Mikroobjektiv für Universal Mobiltelefone (60x Mit Clip)

Vorteile: mit Lichtquelle, optimal für unterwegs, günstiger Preis

Nachteile: Schatten bei Aufnahme möglich, da Licht von Seite, Batteriebetrieb

Aufsatzlupe für Smartphone

Vorteile: ohne Batterie nutzbar, optimal für unterwegs, verschiedene Objektive möglich, günstiger Preis

Nachteile: ohne Lichtquelle

Wi-Fi Digital Mikroskop 1000x, USB-Digital

Vorteile: hohe Auflösung, 8fach LED-Licht, Übertragung auf Mobiltelefon, Aufladung über Kabel

Nachteile: nicht optimal für unterwegs

Probetöpfchen zum Sammeln für Insekten

zur weiteren Bestimmung im Labor

Papierabklebungen (Holzschädlinge)

Akustisches Aktivitäts-Detektions-System für holzzerstörende Insekten (IADS).

Nachweis der Aktivität von verschiedenen Larven, wie z.B. Nagekäfer, Splintholzkäfer oder Hausbock im Holz mittels Schallemission

Akku-Inspektionskamera (Video-Endoskop) für die Untersuchung von Hohlräumen

Weitere Methoden zur Detektion von Insekten, wie z.B. Röntgenstrahlung, Thermografie, akustische Schallemissions-Messung usw. sind in der nachfolgenden Literaturliste zu finden.

Biologische Hilfsmittel

Erste Feldversuche zeigten, dass trainierte Spürhunde auch zum Aufspüren eines Insektenbefalls helfen können

(Bildquelle Querner)

DNA-Barcoding zur taxonomischen Bestimmung von Tieren, Pflanzen und Pilzen.

In Deutschland über den GBOL German Barcode of Life durch Inventarisierung und genetische Charakterisierung.

Literatur

Al-Doski J. et. al. (2016) Thermal Imaging for Pests Detecting – A review. International Journal of Agriculture, Forestry and Plantation, Vol. 2, 10-30

Arbat S. et al. (2021) The Case History of an Insect Infestation Revealed Using X-ray Computed Tomography and Implications for Museum Collections Management Decisions. Heritage 4, 1016–1025 The Case History of an Insect Infestation Revealed Using X-ray Computed Tomography and Implications for Museum Collections Management Decisions (researchgate.net)

Becker, M, Berger, B, König, S, Taddei, A, Hoppe, B, Plinke, B (2020): Innovative Diagnosemethoden zum Nachweis holzzerstörender Insekten. In: Journal für Kulturpflanzen 72(8), 453-465

Biebl S. und Wapler G. (2023) Dem Holzwurm auf der Spur. Akustische Aktivitäts-Detektion von holzzerstörenden Insekten. Der praktische Schädlingsbekämpfer, Ausgabe 1, S. 16-17

Creemers, J G M (2015): Use of Acoustic Emission (AE) to Detect Activity of Common European Dry-Woodboring Insects: Practical Considerations. Int. Symp. Non-Destructive Testing in Civil Engineering (NDT-CE), Berlin, Germany, 573-580.

Kerner G., Thiele H., Unger W (1980) Gesicherte u. zerstörungsfreie Ortung der Larven holzzerstörender Insekten im Holz, In: Holztechnologie 21 (3). S 131-137

Krajewski A et al (2020) The progress in the research of AE detection method of old house borer larvae (Hylotrupes bajulus L.) in wooden structures. Construction and Building Materials 256

Lewis V. et al (1997) Evaluation of dog-assisted searches and electronic odor devices for detecting the western subterranean termite. Forest Product Journal. Vol. 47, No.10. 79-84

Morinière J. et. al (2019) A DNA barcode library for 5,200 German flies and midges (Insecta: Diptera) and its implications for metabarcoding-based biomonitoring. Mol Ecol Resour. 19. 900–928.

Müller-Blenkle, C., S. Kirchner, I. Szallies und Adler C. (2018) A new approach to acoustic insect detection in grain storage. Submitted to the Proceedings of the 12th International Working Conference on Stored Product Protection Berlin, Germany, October 7-11. Akustische Früherkennung von vorratsschädlichen Insekten in Getreide

Noldt, U (2014): Insekten. In: Binker, G, Brückner, G, Flohr, E, Huckfeldt, T, Noldt, U, Parisek, L, Rehbein, M, Wegner, R: Praxis-Handbuch Holzschutz – Beurteilen, Vorbereiten, Ausführen. Verlag Rudolf Müller, Köln, p. 112-153.

Pamplona M. and Grosse C. (2019) Zerstörungsfreie Prüftechniken für die Anwendung an technischen Kulturgütern in Museen. DGFzP Jahrestagung. S. 1-7

Querner P. und Sauseng G. (2019) Spürhundearbeit im Integrated Pest Management. Restauro 2. S. 44-49

Sachs J, Helbig M, Renhak K (2008): Unsichtbares wird sichtbar – Mit Radar den Insekten auf der Spur. Dokumentation zum Kongress des Deutschen Holz- und Bautenschutzverbandes in Kooperation mit der WTA 30. und 31. Oktober 2008, Landschaftspark Duisburg-Nord. Hrsg.: Deutscher Holz- und
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Schmidt R., Göller S., Hertel H. (1995) Computerized detection of feeding sounds from wood boring beetle larvae. Material und Organismen. 295-304

Tscherne F. (2016) Schadensbegutachtung an Holzkonstruktionen. In: EIPOS-Tagungsband Holzschutz 2016, Fraunhofer IRB Verlag, S. 65-75

Vaiedelich, S. and S. Le Conte (2013) In situ acoustical detection of Xylophage. Programme International Conference on IPM in museums, archives and historic houses, Vienna 2013: 70